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斑马鱼产品
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基本信息-
产品名称植物核DNA微量提取试剂盒
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保存温度按试剂盒各组分温度保存
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有效期6个月
产品简介从植物组织中制备基因组 DNA 较常采用的方法有氯化离心法、CTAB 抽提法等，CTAB抽提法是经典且迅速的植物 DNA 提取法，可以用于多种不同类型植物样品中DNA的提取，获得的量很高但纯度一般，但是足够用于大多数分子生物学实验。
本品植物核DNA微量提取试剂盒是简单快速简便的提取植物核中DNA的试剂盒，先将新鲜植物样本研磨破碎细胞壁，采用差速离心法分离出细胞核并将其裂解，再用有机溶剂沉淀并去除核蛋白质，无水乙醇抽提出核 DNA。本法操作情况下，0.5g 新鲜叶片可得5~15μg 核 DNA，纯度较高，可用于基因分子操作(限制酶酶切等)及扩增(PCR、RAPD)等。该试剂仅用于科研领域，不宜用于临床诊断或其他用途。
产品组成| 组分 | 50T | 100T | 保存温度 |
| 试剂(A): 核提取缓冲液 | 100ml | 0.05ml | 2-8℃ 避光 |
| 试剂(B): 核裂解液 | 50ml | 100ml | 2-8℃ |
| 试剂(C): 蛋白沉淀剂 | 50ml | 100ml | 室温 避光 |
| 试剂(D): 柠檬酸缓冲液 | 25ml | 50ml | 2-8℃ |
| 试剂(E): TE Buffer | 5ml | 10ml | 室温 |
| 试剂(F): RNase A(10mg/ml) | 0.05ml | 0.1ml | -20℃ 避光 |
操作步骤（仅供参考）自备材料
1. 电子天平、滤纸、剪刀、液氮、研钵或匀浆器
2. 离心机、离心管、冰箱、恒温箱或水浴锅
3. 蒸馏水、无水乙醇、70%乙醇
操作步骤(仅供参考)
(一)样品处理及分离细胞核
1. 称取 0.2~0.3g 新鲜幼叶样本等，用蒸馏水清洗干净，滤纸吸干水分，剪成碎片，置于匀浆器中，然后加入 1ml 核提取缓冲液，匀浆 1min。
2. 匀浆液转移至离心管，用 1ml 核提取缓冲液清洗匀浆器，并转入离心管中。
3. 室温下相对离心力 70g 离心 10min，转移上清液至新的离心管中，弃去组织碎片沉淀上清液再用相对离心力 750g 离心 15min，去上清，保留细胞核沉淀。
(二)细胞核裂解及核DNA提取
1. 向细胞核沉淀中加入 1ml 核裂解液，悬浮沉淀，60℃水浴 30min。
2. 加入 0.9ml 蛋白沉淀剂，温和颠倒离心管并混匀，4℃下相对离心力8500g 离心15min，转移上清液于新的离心管中。
3. 向上清中加入 0.5ml 的柠檬酸缓冲液和 2ml 的无水乙醇，混匀，-20℃静置30min。
4. 4℃下相对离心力 8500g 离心 15min，去除上清液。
5. 加入 1ml70%乙醇洗涤沉淀，温箱吹干，即得核 DNA 沉淀。
(三)核DNA纯化
1. 向上述核 DNA 沉淀中加入 50~80μl TE Buffer 和 0.8μl RNase A(10mg/ml)，并充分溶解混匀，37℃保温 1h。
2. 再加入 80μl 蛋白沉淀剂，温和颠倒离心管并混匀，室温下 10000r/min 离心10min，转移上层溶液于新的离心管中。
3. 向上层溶液中加入 2 倍体积的无水乙醇重新沉淀，即得经纯化的核DNA。
4. 经纯化的核 DNA 溶解于 10μl TE Buffer 中。
注意事项1. 如果每次的使用量很小，可以适当分装后再使用。
2. 用于裂解植物组织或叶片越新鲜，裂解效果越好、收获量越大。
3. 加入柠檬酸缓冲液，使提取液 pH 下降，防止核裂解液中的有效成分被乙醇沉淀。
4. 提取过程中的机械力可使大分子 DNA 断裂，因此各步操作均应温和，避免剧烈震荡。
5. 使用到的器皿、离心管最好经过硅化处理。
6. 我司生产的生化试剂如无特殊标注，基本为非无菌包装，若用于细胞实验，请提前做好预处理。需低温保存的产品，一旦配成溶液，请分装保存，避免反复冻融造成的产品失效。
7. 本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗，食品及化妆品等用途。请勿存放于普通住宅区。
8. 为了您的安全和健康，请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。
9. 实验结果可由多种因素影响，相关处理只限于产品本身，不涉及其他赔偿。
备注：由于产品信息可能会有优化升级。请以实际收货标签信息为准。
