- 生化试剂
- ELISA检测
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抗体蛋白
二抗生物素标记 过氧化物酶(HRP)标记 胶体金试剂 FITC荧光标记 RBITC荧光标记 二抗免疫血清 其它荧光标记二抗 藻红蛋白(PE)荧光标记 胶体金(Gold)标记 SAlexa Fluor荧光系列 碱性磷酸酶(AP)标记 别藻蓝蛋白(APC)荧光标记 其它标记 PE标记二抗 DyLight标记二抗 AU标记二抗 Biotin标记二抗 AMCA标记二抗 Texas Red标记二抗 TRITC标记二抗 HRP标记二抗 未标记二抗 Cy标记二抗 AbBox Fluor标记二抗内参抗体 小分子抗体
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斑马鱼产品
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Protein A 琼脂糖凝胶是以自制的琼脂糖凝胶为介质,以重组 Protein A 蛋白为配体,具有很高的物理化学稳定性,配基不易脱落,寿命长,使用方便。重组 Protein A 蛋白更适合于结合 mouse IgG2a, IgG2b, IgA, rabbit IgG, 以及 human IgG1, IgG2 和 IgG4。
本产品广泛应用于细胞裂解物、细胞分泌上清、血清、腹水等样品中抗原的免疫沉淀(IP)或免疫共沉淀(Co-IP),也可以用于抗体的纯化。

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基质4%高度交联的琼脂糖凝胶
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配体重组 Protein A 蛋白
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粒径30∽100μm
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浓度凝胶体积占悬浮液体积的 25%
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结合能力≥20mg hIgG/mL 凝胶
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适用范围IP,Co-IP,ChIP,RIP,抗体纯化等
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保存温度2-8℃
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有效期2年

注意:缓冲液自行准备或直接购买我司 IP 试剂盒。
贴壁细胞样品
1. 移去培养基,用 PBS 洗细胞两次。
2. 收集细胞至 1.5mL EP 管内,按比例加入 IP Lysis/WashBuffer,同时加入 PMSF 等相应的抑制剂,混匀后置于冰上静置 5∽20min(期间混匀几次)。
3. 4℃, 12000∽16000xg,10min 离心收集上清液,置于冰上以备后续实验(或置于-80℃长期保存)。
培养皿 IP Lysis/Wash Buffer 推荐使用体积:
培养皿大小/表面积 | IP Lysis/Wash Buffer 体积 |
100 mm x 100 mm | 500∽1000µL |
100 mm x 60 mm | 100∽300µL |
6 孔板 | 100∽200µL |
悬浮细胞样品
1. 4℃、500∽1000xg、10min,收集细胞,弃上清。
2. 用 PBS 洗细胞一次,即用 PBS 将细胞团重悬,4℃、500∽1000xg、5min,收集细胞,弃上清。
3. 用预冷的 IP Lysis/Wash Buffer 重悬细胞。每 50mg细胞使用 500μL IP Lysis/Wash Buffer。同时加入 PMSF等相应的抑制剂,混匀后置于冰上静置 5∽20min(期间混匀几次)。
4. 4℃,12000∽16000xg,10min 离心收集上清液,置于冰上以备后续实验(或置于-80℃长期保存)。
血清样品
一般建议建议用 IP Lysis/Wash Buffer 稀释血清样品至目标蛋白终浓度为 50~150µg/mL,置于冰上备用(或置于-20℃长期保存)。
免疫复合物的制备
注意:样品所需的量和孵育时间均依赖于每个特定的抗体抗原体系,因而可能需要优化才能得到最大产量。以下实验方案针对 2∽10μg 亲和纯化的抗体,根据需要可以按比例放大。
1. 在离心管中,将每个样品的细胞裂解液与 2∽10μg 免疫沉淀抗体结合。每个免疫沉淀反应推荐的总蛋白量为 500∽1500μg。
2. 用IP Lysis/Wash Buffer将抗体以及制备好的样品稀释至 300∽500μL。
3. 在室温下孵育 1∽2h,或 4℃ 2∽4h,以形成免疫复合物。
免疫沉淀
注意:为保证凝胶均匀分布,使用前通过反复颠倒或轻微涡旋混匀瓶中凝胶。
1. 将 20∽50µL 的Protein A 琼脂糖凝胶加入 1.5mL 离心管中。
2. 向凝胶中加入 500µL 预冷 PBS,轻柔混匀。
3. 将离心管放入离心机中 1000rpm、5min 收集凝胶到离心管的底部,去除上清。
4. 向离心管中加入 200∽500µL IP Lysis/Wash Buffer。颠倒离心管数次或轻微涡旋混匀 1min。将离心管放入离心机中 1000rpm,5min 收集凝胶到离心管的底部,去除上清。
5. 将制备好抗原样品/抗体混合物样品加入装有凝胶的离心管中,保持混匀室温下孵育 1∽2h,或 4℃ 2∽4h。6. 离心 1000rpm,5min 收集凝胶,除去未结合的样品,保存以备分析。
7. 向离心管中加入 1000µL IP Lysis/Wash Buffer,轻柔混匀 5∽10min。收集凝胶,弃上清。再重复洗两次。
8. 变性洗脱:向离心管中加入 80∽100µL SDS-PAGE Sample Loading Buffer(1×),将样品置于 100℃水浴或者金属浴中加热 10min。通过离心分离凝胶,保留含有目的抗原的上清。
备注:如需保持蛋白活性,也可采用以下洗脱方式。
低 pH 洗脱:向离心管中加入 100µL Elution Buffer。保持混匀在室温下孵育离心管 5∽10min。通过离心分离凝胶,保留含有目的抗原的上清。每 100µL 洗出液中加入20µL Neutralization Buffer 来中和低 pH。

1. 进行实验操作之前,请务必认真阅读本操作说明书。
2. IP 实验中不同类型的抗体与抗原结合的亲和性是有区别的,抗体与抗原结合还会受到 IP Lysis/Wash Buffer 的影响,因此可自行优化操作细节或者筛选及配制缓冲液进行实验。
3. 琼脂糖凝胶使用前应充分振荡均匀。凝胶应保存在储存溶液中,防止干燥
4.本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗,食品及化妆品等用途。请勿存放于普通住宅区。
5.为了您的安全和健康,请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。
6.实验结果可由多种因素影响,相关处理只限于产品本身,不涉及其他赔偿。
备注:由于产品信息可能会有优化升级,请以实际收货标签信息为准。

1. 抗原没有免疫沉淀下来
① 样品中所含的抗原过少,不足以被检测
建议:通过 SDS-PAGE 或蛋白免疫印迹验证裂解液中蛋白的表达和/或裂解效率; 如果需要,加大样品量
② 抗体无法结合抗原
建议:选择另一种特异性抗体,或者选择另一种识别不同抗原表位的抗体。
③ IP Lysis/Wash Buffer 中的成分干扰了抗原与抗体的结合
建议:使用其它缓冲液进行免疫沉淀和漂洗(例如,含有 0.5% CHAPS 的 TBS)
2. 获得的蛋白量低
① 蛋白质被降解
建议:加入蛋白酶抑制剂
② 所使用的凝胶量不够
建议:提高捕获免疫复合物所使用的凝胶量
③ 样品中的目标蛋白量不够
建议:提高抗原样品量
3. 多条非特异条带有非特异性的蛋白结合在凝胶上
建议:在 IP Lysis/Wash Buffer 中加入 50∽350mMNaCl。加大洗脱力度和次数。
4. 凝胶易粘附管壁
建议:使用低吸附率的耗材进行凝胶操作。