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二抗生物素标记 过氧化物酶(HRP)标记 胶体金试剂 FITC荧光标记 RBITC荧光标记 二抗免疫血清 其它荧光标记二抗 藻红蛋白(PE)荧光标记 胶体金(Gold)标记 SAlexa Fluor荧光系列 碱性磷酸酶(AP)标记 别藻蓝蛋白(APC)荧光标记 其它标记 PE标记二抗 DyLight标记二抗 AU标记二抗 Biotin标记二抗 AMCA标记二抗 Texas Red标记二抗 TRITC标记二抗 HRP标记二抗 未标记二抗 Cy标记二抗 AbBox Fluor标记二抗内参抗体 小分子抗体
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产品名称IMM-Quick Hela细胞专用转染试剂
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保存温度2-8℃
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有效期1年
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应用用于 Hela 细胞的瞬时转染和稳定细胞系构建(立传立转)

IMM-Quick系列转染试剂是一类具有自主知识产权、独特配方的阳离子型转染试剂,具有高效、低毒和易于使用等优点,推荐用于常规哺乳动物细胞系的瞬时转染和稳定细胞系构建。IMM-Quick区别于常规转染试剂的两个最主要特点是:(1)可以在贴壁细胞传代后尚未贴壁时立即进行转染(立传立转);(2)转染操作可在一分钟内完成。
重要提示
1. 与常规转染试剂不同,使用IMM-Quick可在贴壁细胞传代后尚未贴壁时直接进行转染(立传立转),从而可节省 18~24 小时的转染前细胞培养时间。
2. IMM-Quick极大简化了转染操作,转染试剂和质粒混合后无需室温静置孵育,可直接加入含血清的细胞培养基中进行转染,而且无需在转染后补加血清或更换培养基,整个转染操作可在一分钟内完成。
3. 立传立转、一分钟完成转染操作和高转染效率等优点使得部分使用IMM-Quick的转染实验可在细胞传代后 24 小时内完成,从而比常规转染试剂节约 24~48 小时。
4. 以 24 孔细胞板转染实验为例,推荐一次(即每孔)转染的低内毒素质粒DNA 用量为1~2µg、转染试剂用量为 3~5µl(请在正式实验前根据不同细胞和不同培养基用报告基因进行优化),质粒和转染试剂可用无菌生理盐水稀释。
5. IMM-Quick经过 DMEM、RPMI-1640 和 M199 等常规培养基测试,虽然在实验中推荐使用DMEM,但有实验结果表明 M199 能够显著增强IMMblot对 Vero 细胞和 293FT 细胞的转染效果,因此可尝试使用不同培养基对转染条件进行优化。
6. IMM-Quick设计用于常规哺乳动物细胞系的瞬时转染和稳定细胞系构建,不推荐但可尝试用于哺乳动物原代细胞和二倍体细胞的转染。
7. IMM-Quick转染试剂建议常温运输,2~8ºC 保存(在-30 ºC 到室温范围内均可长时间稳定保存),无菌取用,有效期12个月。
附表 1 IMM-Quick用量一览表(仅供参考,建议优化)
培养器皿 | 表面积(cm2) | 培养基用量(ml) | DNA 用量(μg)/生理盐水用量(μl) | 转染试剂用量(μl)/生理盐水用量(μl) |
96 孔板 | 0.4 | 0.2 | 0.4/25 | 0.8/25 |
24 孔板 | 2 | 1 | 2/50 | 4/50 |
12 孔板 | 4 | 2 | 4/50 | 8/50 |
6 孔板 | 9 | 3 | 6/100 | 12/100 |
35mm 培养皿 | 9 | 3 | 6/100 | 12/100 |
60mm 培养皿 | 21 | 6 | 12/200 | 24/200 |
100mm 培养皿 | 55 | 15 | 30/400 | 60/400 |
25cm2培养瓶 | 25 | 7 | 14/200 | 28/200 |
75cm2培养瓶 | 75 | 20 | 40/400 | 80/400 |
175cm2培养瓶 | 175 | 50 | 100/1000 | 200/1000 |

1. 将新鲜消化的 Hela 细胞接种到 24 孔细胞板中,每孔 1~2×105细胞,1ml 完全培养基。
备注:可在生长旺盛的细胞传代后直接按下述步骤 2~5 进行转染,无需 18~24 小时的等候时间。
2. 将 1~2μg 质粒 DNA 和 3~5μl 转染试剂分别稀释到 50μl 生理盐水中。
备注:质粒DNA和转染试剂的最适用量需要根据不同培养基来优化,但理论上不超出 1~2µg 和 3~5µl 范围。
3. 合并上述两溶液并混匀。
备注:无需其它转染试剂所需的 10~30 分钟的等候时间。
4. 将上述复合物直接加入到细胞培养基中,用加样器吸打混匀。
备注:转染复合物可直接加入含血清的细胞培养基中进行转染。
5. 将细胞板移至 37ºC/5% CO2孵箱中进行培养。
备注:无需在转染后 4~6 小时补加血清或更换培养基。
6. 24~72 小时后根据实验需要进行瞬时表达分析或稳定细胞系加压筛选。

1. 质粒 DNA:请用能够去除内毒素的方法制备高质量的质粒 DNA。
2. 稀释液:0.85%(W/V)生理盐水,用低内毒素纯水配制,高压消毒或除菌过滤。
3. 培养基:经过 DMEM、RPMI-1640 和 M199 等常规培养基测试,推荐使用含5~10%牛血清的DMEM,若转染效果不理想可尝试其它培养基。
4. 以 24 孔细胞板转染实验为例,推荐每孔低内毒素质粒 DNA 用量为 1~2µg、转染试剂用量为3~5µl,请在正式实验前根据不同培养基用报告基因进行优化。
5. 立传立转要求使用生长旺盛的细胞,即细胞生长至 80-90%成片或刚长满。若使用生长过老的细胞,将明显影响立传立转的效率。
6. 立传立转对细胞状态要求较高,如果转染效果不理想,可按增强型转染试剂的转染方法(IM10279),在细胞贴壁后进行标准转染操作。
7. 本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗,食品及化妆品等用途。请勿存放于普通住宅区。
8. 为了您的安全和健康,请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。
9. 实验结果可由多种因素影响,相关处理只限于产品本身,不涉及其他赔偿。
备注:由于产品信息可能会有优化升级。请以实际收货标签信息为准。