碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一种 DNA 结合染料，它可以染色坏死细胞或凋亡晚期丧失细胞膜完整性的细胞的细胞核。PI 可以由 488、532 或 546nm的激光激发，呈现红色荧光。
Annexin V(膜联蛋白-V)是一种分子量为 35-36 KD 的 Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，可与磷脂酰丝氨酸(PS)选择性结合。磷脂酰丝氨酸(PS)主要分布在细胞膜内侧，即与细胞浆相邻的一侧。在细胞发生凋亡的早期，不同类型的细胞都会把磷脂酰丝氨酸外翻到细胞表面，暴露在细胞外环境中。此时，使用绿色荧光探针 FITC 标记的 Annexin V，即FITC-AnnexinV，与外翻的磷脂酰丝氨酸(PS)结合，就可用流式细胞仪或荧光显微镜直接检测到磷脂酰丝氨酸的外翻这一细胞凋亡的重要特征。对于坏死或晚期凋亡的细胞，由于细胞完整性已经被破坏，FITC - Annexin V 则可以进入胞浆与处于磷脂层内侧的 PS 结合，从而也使坏死细胞呈现绿色荧光。
FITC-Annexin V/PI 凋亡试剂盒提供了一种快速简便的方法，通过标记早期凋亡细胞(绿色)和坏死或晚期凋亡的细胞(红色)检测细胞凋亡水平。本产品有以下特点：①使用方便：类型选择多，选择范围广；②稳定性好：荧光亮度高且不易淬灭；③分群效果好：分群明显，特异性强。本产品可以使用流式细胞仪或其它荧光检测设备进行检测。

自备材料
1. 流式细胞仪（主推）、荧光显微镜、离心机、离心管
2. PBS 缓冲液、培养基、细胞样本
操作步骤(仅供参考)
一、实验组别设计
无自发荧光样本

自发荧光样本

空白对照：调节阈值和仪器电压。
阴性对照：排除实验操作对实验结果的影响，扣除荧光背景，同时还可以作为实验组划门的依据。
单阳对照：调节补偿，同时也可以辅助调节该通道的电压，防止信号超出仪器接收范围。
实验组：用空白管和单染管调节好电压补偿后，获得所需要的流式数据。
二、收集细胞
(一)对于悬浮细胞
1. 在进行完细胞凋亡刺激后，1000 rpm 离心 5 min，弃上清，收集细胞，用PBS 轻轻重悬细胞并计数。
注：PBS 重悬不能省略，PBS 重悬的过程同时也起到了洗涤细胞的作用，可以保证后续Annexin V的结合。
2. 取 5×10⁵~1×10⁶ 个重悬的细胞，1000 rpm 离心 5 min，弃上清，加入100 µL 1×Annexin V 结合缓冲液轻轻重悬细胞。
3. 加入 5 µL FITC-Annexin V，轻轻混匀。
4. 加入 5 µL PI 染色液，轻轻混匀。
5. 室温(20~25℃) 避光孵育 10~15 min。可以使用铝箔进行避光。孵育过程中可以重悬细胞 2~3 次以改善染色效果。
(二)对于贴壁细胞
1. 把细胞培养液吸出至一合适离心管内，PBS 洗涤贴壁细胞一次，加入适量胰酶细胞消化液（不含 EDTA）消化细胞。室温孵育至轻轻吹打可以使贴壁细胞吹打下来时，即可停止消化。这一步需避免胰酶的过度消化。
注：对于贴壁细胞，胰酶消化步骤很关键。胰酶消化时间如果过短，细胞需要用力吹打才能脱落，容易造成细胞膜的损伤，从而导致细胞坏死的假阳性；消化时间如果过长，同样易造成细胞膜损伤而出现细胞坏死的假阳性，甚至会影响细胞膜上磷脂酰丝氨酸与 Annexin V 的结合从而干扰对于细胞凋亡的检测。
2、加入上步中收集的细胞培养液，把细胞轻轻吹打下来，转移到离心管内，1000 rpm离心 5 min，弃上清，收集细胞，用 PBS 轻轻重悬细胞并计数。
注：加入上步中的细胞培养液非常重要，一方面可以收集已经悬浮的发生凋亡或坏死的细胞，另一方面细胞培养液中的血清可以有效抑制或中和残留的胰酶。残留的胰酶会消化并降解后续加入的AnnexinV，导致染色失败。
3. 取 5×10⁵~1×10⁶ 个重悬的细胞，1000 rpm 离心 5 min，弃上清，加入100 µL 1×Annexin V 结合缓冲液轻轻重悬细胞。
4. 加入 5 µL FITC-Annexin V，轻轻混匀。
5. 加入 5 µL PI 染色液，轻轻混匀。
6. 室温(20~25℃) 避光孵育 10~15 min。可以使用铝箔进行避光。孵育过程中可以重悬细胞 2~3 次以改善染色效果。
三、结果分析
(一)流式细胞仪检测
1. 孵育完成后，可直接加入 400 μL 1× Annexin V 结合缓冲液重悬细胞，立即上机检测，FITC-Annexin V 由 488 nm 激光激发，检测荧光发射光谱在 530 nm处（FITC 通道），PI 通道发射光谱约在 617 nm 处。
2. 在双变量流式细胞仪的散点图上，左下象限显示活细胞，为 (FITC-Annexin V-/PI-)；右下象限为早期凋亡细胞，为 (FITC-Annexin V+/PI-)；右上象限是坏死与晚期凋亡细胞，为 (FITC-Annexin V+/PI+)；左上象限显示裸核细胞，为 (FITC-Annexin V-/PI+)。
(二)荧光显微镜检测
1. 1000 rpm 离心 5 min，收集细胞，用 400 µL 1× Annexin V 结合缓冲液轻轻重悬细胞。将细胞移至 96 孔板中沉降片刻或进行细胞涂片后，置于荧光显微镜下观察。
2. FITC-Annexin V 可用 FITC 适用滤光片。PI 可用 Cy3 或者 Texas 适用的滤光片。
四、结果展示（示例）
1. 图 1 中左图为没有做任何处理的正常细胞，右图为诱导细胞凋亡后的细胞组。两图中均有十字门划分出各个象限。
左上角：Annexin V-/PI+，机械损伤细胞；右上角：Annexin V+/PI+，晚期凋亡细胞或坏死；右下角：Annexin V+/PI-，早期凋亡细胞；左下角：Annexin V-/PI-，正常细胞。

                                                
                                                               图 1 流式细胞仪结果图
2. 图 2 是悬浮细胞 Jurkat 诱导凋亡后染色图。其中绿色为 Annexin V 染色细胞膜（以FITC 为例），红色为染色细胞核（以 PI 为例）
                                                             
                                                                 图 2 荧光显微镜结果图

1. 使用前请将产品瞬时离心至管底，再进行后续实验。
2. 为降低细胞凋亡进程，孵育过程可在冰上操作，但孵育时间至少延长至30 min。
3. 由于细胞凋亡是一个快速的过程，建议样品在染色后 1 h 之内进行分析。
4. 为了避免洗涤细胞时损失细胞，在吸液时可以用大的 Tip 头套上小的Tip 头吸液。
5. 荧光染料均存在淬灭问题，请尽量注意避光，以减缓荧光淬灭。

6. 我司生产的生化试剂如无特殊标注，基本为非无菌包装，若用于细胞实验，请提前做好预处理。需低温保存的产品，一旦配成溶液，请分装保存，避免反复冻融造成的产品失效。
7. 本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗，食品及化妆品等用途。请勿存放于普通住宅区。

8. 为了您的安全和健康，请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。

9. 实验结果可由多种因素影响，相关处理只限于产品本身，不涉及其他赔偿。

备注：由于产品信息可能会有优化升级。请以实际收货标签信息为准。