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- 用途:经典的糖原染色法,不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜
基本信息-
中文名称糖原PAS染色液(含苏木素)
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别名过碘酸-雪夫(PAS)染色液
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保存温度2-8℃ 避光
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有效期1年
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应用经典的糖原染色法,不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜
产品简介糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等;过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色,由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化,这是很关键的步骤。
本品糖原PAS染色液特点是采用本公司特有配方技术,大大增强了染色效果;性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需 1h 左右。该试剂仅用于科研领域,不适用于临床诊断或其他用途。
产品组成
操作步骤(仅供参考)自备材料
1. 10%福尔马林固定液
2. 蒸馏水、系列乙醇、二甲苯或环保脱蜡透明液、中性树胶
操作步骤(仅供参考)
1. 常规固定,常采用 10%福尔马林固定液,常规脱水包埋。
2. 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
3. 自来水冲洗 2~3min,再用蒸馏水浸洗 2 次。
4. 入过碘酸溶液室温放置 5~8min,一般不宜超过 10min。
5. 自来水冲洗 1 次,再用蒸馏水浸洗 2 次。
6. 入 Schiff Reagent 置于室温阴暗处浸染 10~20min,自来水冲洗10min。
7. 入苏木素染色液,染细胞核 1~2min,酸性乙醇分化液分化2~5s。
8. 自来水冲洗 10~15min,更换蒸馏水清洗,使其返蓝。
9. 逐级常规乙醇脱水,二甲苯或脱蜡透明液透明,中性树胶封固。
染色结果
PAS反应阳性物质(糖原或多糖) :红色或紫红色
细胞核:蓝色
细胞质:深浅不一的红色
备注:颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间的长短。
阴性对照(可选)
1. 取淀粉酶 1g 溶解于 PBS(pH5.3) 100ml,处理 30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理 30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本,对照片不经过碘酸溶液这一步,直接入SchiffReagent,结果应为阴性。
注意事项1. 切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
2. 过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以 18~22℃最佳。
3. 过碘酸溶液和 Schiff Reagent 应置于 4℃密闭保存,使用时避免接触过多阳光和空气,使用前,最好提前 30min 取出恢复到在室温,避光暗处使用。
4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5. 在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
6. 该染色液常用于常规组织切片染色,对于真菌、细胞、极其薄的切片,建议采购糖原PAS染色液(细胞涂片专用)(F14696),糖原PAS染色液(真菌专用) (F13745),因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。
7. 冷冻切片染色时间尽量要短。
8. 试剂开封后请尽快使用,以防影响后续实验效果。
9. 本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗,食品及化妆品等用途。请勿存放于普通住宅区。
10. 为了您的安全和健康,请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。
11. 实验结果可由多种因素影响,相关处理只限于产品本身,不涉及其他赔偿。
备注:由于产品信息可能会有优化升级。请以实际收货标签信息为准。



